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Lobster larva (Photo: ML Beaudin)
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Larves de homard (Photo : M.L. Beaudin)
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Mix 0.3 mL of normal serum with 0.3 mL of each of the dilutions of test sample.
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XI. TECHNIQUES DE DÉTECTION DE CERTAINS PARASITES
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Mix 0.3 mL of normal serum with 0.3 mL of each of the dilutions of test sample.
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XI. TECHNIQUES DE DÉTECTION DE CERTAINS PARASITES
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Place in a beaker and add 25 mL of freshly prepared pepsin digest solution (1.0g of pepsin dissolved in 100 mL of 0.5% HC1) to each gram of macerated material.
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Rassembler 100 g du tissu crânien obtenu et broyer dans un mélangeur pendant 5 minutes avec de l'eau distillée. On peut utiliser jusqu'à 200 ml d'eau par 100 g de tissu crânien.
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Place in a beaker and add 25 mL of freshly prepared pepsin digest solution (1.0g of pepsin dissolved in 100 mL of 0.5% HC1) to each gram of macerated material.
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Rassembler 100 g du tissu crânien obtenu et broyer dans un mélangeur pendant 5 minutes avec de l'eau distillée. On peut utiliser jusqu'à 200 ml d'eau par 100 g de tissu crânien.
  Does Microbubble Aerati...  
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E. coli survivability trends (as colony-forming units (CFU) per mL of seawater) in seawater microcosms over a 120 hour period, for the 4 experimental set-ups examined. (When no cell growth was detected, a value of 1 CFU/mL was used for graphing purposes.)
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Potentiel de survie d'E. coli (unités formatrices de colonies [CFU] par mL d'eau de mer) dans des microcosmes d'eau de mer sur 120 h, en fonction des 4 montages expérimentaux choisis. (À des fins de présentation des tableaux, la valeur de 1 CFU mL-1 était attribuée lorsque aucune prolifération cellulaire n'était observée.)
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E. coli survivability trends (as colony-forming units (CFU) per mL of seawater) in seawater microcosms over a 120 hour period, for the 4 experimental set-ups examined. (When no cell growth was detected, a value of 1 CFU/mL was used for graphing purposes.)
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Potentiel de survie d'E. coli (unités formatrices de colonies [CFU] par mL d'eau de mer) dans des microcosmes d'eau de mer sur 120 h, en fonction des 4 montages expérimentaux choisis. (À des fins de présentation des tableaux, la valeur de 1 CFU mL-1 était attribuée lorsque aucune prolifération cellulaire n'était observée.)
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Note: This is a modification of Shieh's medium. Neomycin (5 μg/mL) and polymyxin B (10 units/mL) can be added to SH agar to facilitate the isolation of myxobacteria by suppressing the growth of other bacteria (Fijan 1969).
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Motilité: Examiner les cultures en phase de croissance logarithmique à l'état frais en suspension dans le bouillon trypticase-soya. Si les résultats ne sont pas probants, vérifier en inoculant en piqûres des tubes contenant le milieu utilisé pour l'étude de la motilité (Difco) ou le milieu glucose – motilité par piqûre profonde (GMD) (Walters et Plumb, 1978).
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Note: This is a modification of Shieh's medium. Neomycin (5 μg/mL) and polymyxin B (10 units/mL) can be added to SH agar to facilitate the isolation of myxobacteria by suppressing the growth of other bacteria (Fijan 1969).
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Motilité: Examiner les cultures en phase de croissance logarithmique à l'état frais en suspension dans le bouillon trypticase-soya. Si les résultats ne sont pas probants, vérifier en inoculant en piqûres des tubes contenant le milieu utilisé pour l'étude de la motilité (Difco) ou le milieu glucose – motilité par piqûre profonde (GMD) (Walters et Plumb, 1978).
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In general, the crustaceans and echinoderms are most sensitive. Field studies suggest that, where seasonal hypoxia occurs, dissolved oxygen (DO) levels of 1 ml·L-1 begin to cause macrofaunal invertebrate mortality (Diaz and Rosenberg 1995).
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La réponse générale des populations et des communautés macrofauniques des sédiments mous aux gradients d'enrichissement organique est bien établie. Elle comprend la disparition locale de la communauté résidente d'équilibre, suivie du réétablissement des espèces opportunistes si les conditions s'améliorent. Certaines espèces sont plus résistantes que d'autres à l'hypoxie (Diaz et Rosenberg, 1995). En général, les crustacés et les échinodermes sont les plus sensibles. Les résultats d'études sur le terrain donnent à penser que, lorsqu'une hypoxie saisonnière se produit, des teneurs en oxygène dissous (O.D.) de 1 ml L-1 commencent à causer la mort des invertébrés macrofauniques (Diaz et Rosenberg, 1995). Aux endroits où les teneurs en oxygène sont faibles en permanence, les communautés benthiques semblent être adaptées à une teneur critique en O.D. même plus faible. Quoique des teneurs en O.D. très faibles soient considérées comme le principal facteur limitant pour la macrofaune, le rôle de H2S (et de l'ammoniac) est moins clair. Lorsqu'une hypoxie grave se manifeste, ces deux gaz peuvent être libérés.
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Of the 18 males examined, mean (± SEM) spermatocrit was 40.7 ± 4.23%, osmolality of the seminal plasma was 366.3 ± 4.95 mOsmol kg-1, pH 8.3 ± 0.04, protein concentration was 1.1 ± 0.08 mg mL-1, anti-trypsin activity was 153.8 ± 19.25 uL-1, and total antioxidant capacity was 0.2 ± 0.03 μmol Trolox equivalents mL-1.
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Les biomarqueurs ou indices pouvant être utilisés pour prédire la qualité des échantillons de spermatozoïdes des poissons suivant un cycle de congélation-dégel sont pratiquement inexistants. Dans le cadre de cette étude, nous avons soumis à des essais une série d'indices de la condition des spermatozoïdes pour déterminer s'ils permettent de prédire avec exactitude le potentiel de cryopréservation des spermatozoïdes de morue franche. Les variables entourant l'activité de spermatozoïdes frais et de spermatozoïdes congelés-dégelés ont été comparées et les liens entre l'activité des spermatozoïdes congelés, puis dégelés, et le succès de la fertilisation ont été examinés. Comparativement aux spermatozoïdes frais, nos résultats montrent clairement une diminution de l'activité des spermatozoïdes cryopréservés. Sur les 18 mâles qui ont été examinés, la moyenne (± SEM) du spermatocrite était de 40,7 ± 4,23 %, l'osmolalité du plasma séminal était de 366,3 ± 4,95 mOsmol kg-1, pH 8,3 ± 0,04, la concentration de protéines était de 1,1 ± 0,08 mg mL-1, l'activité antitrypsine était de 153,8 ± 19,25 μ L-1 et la capacité antioxydante totale était de 0,2 ± 0,03 µmol équivalents de Trolox mL-1. Le succès de la fertilisation variait énormément d'un mâle à l'autre, allant de 18,5 à 90,2 %. Les régressions ont montré des liens positifs importants aux chapitres de la motilité, de la vélocité, de la fréquence des changements de piste et du succès subséquent de la fertilisation par des spermatozoïdes congelés, puis dégelés. Les régressions séquentielles multiples expliquaient jusqu'à 95 % de la variation dans l'activité des spermatozoïdes congelés, puis dégelés. Un lien négatif existait entre le spermatocrite et le pH, tandis que l'osmolalité et la capacité antioxydante présentaient un lien positif avec la motilité et la vélocité des spermatozoïdes congelés, puis dégelés. Comme il est possible de mesurer chacun de ces indices dans les minutes qui suivent la collecte de spécimens de spermatozoïdes frais, ceux-ci constituent des indicateurs précoces de la survie des échantillons de spermatozoïdes à la cryopréservation. Ces résultats présentent de nombreux avantages pour la conservation de stocks sauvages, la production aquacole et la compréhension de la biologie et de la cryobiologie des spermatozoïdes de poisson.
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Of the 18 males examined, mean (± SEM) spermatocrit was 40.7 ± 4.23%, osmolality of the seminal plasma was 366.3 ± 4.95 mOsmol kg-1, pH 8.3 ± 0.04, protein concentration was 1.1 ± 0.08 mg mL-1, anti-trypsin activity was 153.8 ± 19.25 uL-1, and total antioxidant capacity was 0.2 ± 0.03 μmol Trolox equivalents mL-1.
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Les biomarqueurs ou indices pouvant être utilisés pour prédire la qualité des échantillons de spermatozoïdes des poissons suivant un cycle de congélation-dégel sont pratiquement inexistants. Dans le cadre de cette étude, nous avons soumis à des essais une série d'indices de la condition des spermatozoïdes pour déterminer s'ils permettent de prédire avec exactitude le potentiel de cryopréservation des spermatozoïdes de morue franche. Les variables entourant l'activité de spermatozoïdes frais et de spermatozoïdes congelés-dégelés ont été comparées et les liens entre l'activité des spermatozoïdes congelés, puis dégelés, et le succès de la fertilisation ont été examinés. Comparativement aux spermatozoïdes frais, nos résultats montrent clairement une diminution de l'activité des spermatozoïdes cryopréservés. Sur les 18 mâles qui ont été examinés, la moyenne (± SEM) du spermatocrite était de 40,7 ± 4,23 %, l'osmolalité du plasma séminal était de 366,3 ± 4,95 mOsmol kg-1, pH 8,3 ± 0,04, la concentration de protéines était de 1,1 ± 0,08 mg mL-1, l'activité antitrypsine était de 153,8 ± 19,25 μ L-1 et la capacité antioxydante totale était de 0,2 ± 0,03 µmol équivalents de Trolox mL-1. Le succès de la fertilisation variait énormément d'un mâle à l'autre, allant de 18,5 à 90,2 %. Les régressions ont montré des liens positifs importants aux chapitres de la motilité, de la vélocité, de la fréquence des changements de piste et du succès subséquent de la fertilisation par des spermatozoïdes congelés, puis dégelés. Les régressions séquentielles multiples expliquaient jusqu'à 95 % de la variation dans l'activité des spermatozoïdes congelés, puis dégelés. Un lien négatif existait entre le spermatocrite et le pH, tandis que l'osmolalité et la capacité antioxydante présentaient un lien positif avec la motilité et la vélocité des spermatozoïdes congelés, puis dégelés. Comme il est possible de mesurer chacun de ces indices dans les minutes qui suivent la collecte de spécimens de spermatozoïdes frais, ceux-ci constituent des indicateurs précoces de la survie des échantillons de spermatozoïdes à la cryopréservation. Ces résultats présentent de nombreux avantages pour la conservation de stocks sauvages, la production aquacole et la compréhension de la biologie et de la cryobiologie des spermatozoïdes de poisson.