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Keybot 44 Résultats  hc-sc.gc.ca
  Description - Première ...  
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La Première nation d'Elsipogtog, avec une population de 2800 habitants, est située sur une anse de la rivière Richibucto. Elle est la deuxième plus grande communauté micmac du Canada atlantique.
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Elsipogtog First Nation, with a population of 2800, is located on a cove of the Richibucto River. It is the second largest Mi'kmaq community in Atlantic Canada.
  MFLP-37: Partie 1 : Dét...  
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Après incubation, et sans agiter le contenant d'échantillon, transférer une anse de 3 à 5 mm de l'inoculum de la pellicule (croissance de surface) sur la gélose TCBS et optionnellement sur la gélose mCPC.
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Examine plates for colony characteristics described below. Carefully pick 3 or more suspect colonies from each plate, streak each for isolation onto T1N1, T1N2, or tryptic soy agar (2% total NaCl concentration), and incubate for 18-24 h at 35°C. Streaking for isolation on non-selective medium, may be necessary to ensure colonial purity before biochemical testing. Gelatin agar (GA) and gelatin salt (GS) agar may also be inoculated with the same inoculum (see 7.5.2.2 b).
  MFHPB-02: Méthode d'exa...  
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La surface du frottis doit être d'environ 2 x 3 cm. Écraser les morceaux solides avec l'anse durant le frottis, car les frottis trop épais peuvent empêcher une pénétration adéquate de la lumière pendant l'examen microscopique.
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Try, where possible, to include some solid particles in the sample. Smear the sample evenly in a thin layer on the surface of the slide. The area of the smear should be about 2x3 cm. Break solid lumps with the loop during smearing as smears that are too thick may prevent adequate light penetration for microscopic examination. Air dry. The smear is then fixed by gently passing the slide several times through a burner flame. Avoid over heating since this may result in cell distortion and/or breakage of the slide.
  MFHPB-02: Méthode d'exa...  
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On peut éviter ce problème en neutralisant l'acidité de la manière suivante : ajouter une anse de l'échantillon à une lame de verre propre et mélanger avec une goutte de NaOH 0,05 N. (Par exemple, si une goutte de NaOH 0,05 N est ajoutée à une anse (10 µl) d'un aliment ayant un pH de 3,5, on obtiendra un pH d'environ 7,00).
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Acidity sometimes causes excessive precipitation of the stain on the slide making the smear difficult to examine. This can be prevented by neutralisation of the acidity as follows: add one loopful of sample to a clean glass slide and mix with a drop of 0.05N NaOH. (For example, if you add one drop of 0.05N Na0H to one (10 µl) loopful of food having a pH of 3.5, it will give a result of approximately pH 7.00). Follow MFHPB-03 to determine the pH of foods.
  MFHPB-02: Méthode d'exa...  
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On peut éviter ce problème en neutralisant l'acidité de la manière suivante : ajouter une anse de l'échantillon à une lame de verre propre et mélanger avec une goutte de NaOH 0,05 N. (Par exemple, si une goutte de NaOH 0,05 N est ajoutée à une anse (10 µl) d'un aliment ayant un pH de 3,5, on obtiendra un pH d'environ 7,00).
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Acidity sometimes causes excessive precipitation of the stain on the slide making the smear difficult to examine. This can be prevented by neutralisation of the acidity as follows: add one loopful of sample to a clean glass slide and mix with a drop of 0.05N NaOH. (For example, if you add one drop of 0.05N Na0H to one (10 µl) loopful of food having a pH of 3.5, it will give a result of approximately pH 7.00). Follow MFHPB-03 to determine the pH of foods.
  MFLP-37: Partie 1 : Dét...  
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Préparer une suspension bactérienne dense et laiteuse dans une solution saline physiologique à partir d'une culture TSA de 18 à 24 heures. Sur une lame de verre propre, mélanger une anse de globules rouges de poulet lavé (2,5 % dans une solution saline physiologique) avec une suspension de la culture bactérienne à tester.
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Prepare a thick, milky bacterial suspension in physiological saline from an 18 to 24 h TSA culture. On a clean glass slide, mix 1 loopful of washed chicken red blood cells (2.5% in physiological saline) with a suspension of the bacterial culture to be tested. Visible clumping of red blood cells indicates El Tor biotype. Classical strains usually do not agglutinate red blood cells. Perform positive and negative controls.
  MFLP-37: Partie 1 : Dét...  
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Placer 2 ou 3 gouttes du réactif de l'oxydase sur la croissance bactérienne ou transférer une petite quantité de la croissance avec un cure-dent stérile ou une anse de platine ou jetable sur un papier filtre imbibé avec le réactif de l'oxydase.
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Use growth from the GS plate (or other medium with no fermentable carbohydrate) for the oxidase test. Place 2 or 3 drops of oxidase test reagent on bacterial growth or transfer a small amount of growth with a sterile toothpick or platinum or disposable loop to filter paper moistened with oxidase reagent. (Do not use nickel chromium loops.) A dark blue color should develop rapidly (within 2 min) denoting a positive reaction.
  Aliments et nutrition  
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7.7.6 Utiliser une aiguille ou une anse stérile pour mélanger chacune des suspensions de culture, de solution physiologique et d'antisérum dans les zones T et C+, et le mélange de solution physiologique et de culture dans la zone C-.
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7.7.4 Remove sufficient culture material from a triple sugar iron, lysine iron or nutrient agar slant to prepare a heavy suspension in the test area and in the negative control area. The inoculum should be withdrawn from the slope portion of the agar slants.
  MFLP-90 : Détection d'E...  
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6.6.2 À l'aide d'un écouvillon stérile, ensemencer les complexes bille-bactérie sur une moitié de la plaque Pétri, pour assurer la rupture des complexes bille-bactérie. Diluer davantage par étalement sur plaque à l'aide d'une anse.
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6.6.2 Spread the bead-bacteria complexes over one half of the plate with a sterile swab. This ensures the break-up of the bead-bacteria complexes. Dilute further by streaking with a loop. Always carry the loop back into the previously streaked quadrant several times to ensure that the beads reach a fresh unstreaked quadrant.
  MFLP-37: Partie 1 : Dét...  
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À l'aide d'un écouvillon, étaler sur la surface d'une plaque de gélose de Muller-Hinton une culture du bouillon 4 heures afin d'obtenir une croissance bactérienne confluente. Laisser les plaques absorber l'inoculum et placer une anse de la dilution appropriée du phage IV sur la surface de la gélose avec une anse de 3 mm.
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This method is a modification of that described by Finkelstein and Mukerjee (8.9). Inoculate HI broth with the strain to be tested and incubate at 35°C for 4 h. Swab surface of Mueller-Hinton agar plate with a 4 h broth culture to obtain confluent bacterial growth. Let plates absorb inoculum and place 1 loopful of the appropriate test dilution of phage IV onto the agar surface with a 3 mm loop. Observe the plate after overnight incubation at 35°C. Classical biotype strains are usually sensitive to this bacteriophage and will lyse on the plate where the phage was placed (indicated by clear plaque). El Tor biotype strains are resistant to this bacteriophage and will not be lysed (indicated by confluent growth). Use this same method to test for sensitivity to El Tor phage V.
  Appareil cardiovasculai...  
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Les diurétiques de l'anse (par exemple, furosémide) sont utilisés pour atténuer les symptômes d'insuffisance cardiaque congestive. Une fois la congestion résolue, la dose devrait être réduite à une concentration permettant de stabiliser les symptômes (surveillance du poids, du potassium sérique et de la fonction rénale).
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All patients with a left ventricular ejection fraction ≤ 40% should receive an ACE inhibitor and a beta-blocker. They are first-line therapy for all patients with heart failure (NYHA class II-IV), unless contraindicated or not tolerated.11
  MFHPB-02: Méthode d'exa...  
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Bien mélanger le contenu. À l'aide d'une anse d'échantillonnage bactériologique stérile, prélever un échantillon du contenu et le transférer sur une lame de verre propre pour microscope. Étaler pour former un mince film.
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Mix contents thoroughly. Using a sterile bacteriological sampling loop, take a sample of the contents and transfer it to a clean glass microscope slide. Spread to form a thin film.
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20 anse+
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et al
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20 - 70 anse
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0.00016 to 0.00033
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de 20 à 70 anse
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  Recherche et de dévelop...  
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6. anse de Henle
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6. Loop of Henle
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12 - 19 anse
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Route of Exposurea
  Appareil cardiovasculai...  
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Diurétiques de l'anse par voie IV :
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furosemide (Lasix), 40-80 mg IV push
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12 à 19 anse
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0 to 0.5 yrb
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6.6.2 Spread the bead-bacteria complexes over one half of the plate with a sterile swab. This ensures the break-up of the bead-bacteria complexes. Dilute further by streaking with a loop. Always carry the loop back into the previously streaked quadrant several times to ensure that the beads reach a fresh unstreaked quadrant.
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À l'aide d'un écouvillon, étaler sur la surface d'une plaque de gélose de Muller-Hinton une culture du bouillon 4 heures afin d'obtenir une croissance bactérienne confluente. Laisser les plaques absorber l'inoculum et placer une anse de la dilution appropriée du phage IV sur la surface de la gélose avec une anse de 3 mm.
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This method is a modification of that described by Finkelstein and Mukerjee (8.9). Inoculate HI broth with the strain to be tested and incubate at 35°C for 4 h. Swab surface of Mueller-Hinton agar plate with a 4 h broth culture to obtain confluent bacterial growth. Let plates absorb inoculum and place 1 loopful of the appropriate test dilution of phage IV onto the agar surface with a 3 mm loop. Observe the plate after overnight incubation at 35°C. Classical biotype strains are usually sensitive to this bacteriophage and will lyse on the plate where the phage was placed (indicated by clear plaque). El Tor biotype strains are resistant to this bacteriophage and will not be lysed (indicated by confluent growth). Use this same method to test for sensitivity to El Tor phage V.