tls – Übersetzung – Keybot-Wörterbuch

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Terrestrial LiDAR Scanners (TLSs) have been shown to hold great potential as an indirect means of estimating plant structure parameters with a high level of detail, while some studies identified a number of challenges inherent to this approach.

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Les paramètres de la structure végétale constituent des éléments clés dans l’étude du fonctionnement des écosystèmes et des interactions écosystémiques à l’échelle mondiale. L’obtention de données détaillées sur bon nombre de ces paramètres au moyen de mesures directes est toutefois difficile, en raison de la quantité de matières végétales que contiennent les arbres. Les systèmes LiDAR terrestres (SLT) semblent particulièrement prometteurs comme moyens d’estimation indirecte des paramètres de la structure végétale à un niveau de détail très élevé, mais des études ont relevé un certain nombre d’inconvénients associés à cette méthode. Dans la présente étude, nous examinons l’utilisation d’une approche fondée sur des voxels pour définir la répartition de la surface foliaire des arbres. Cette approche est basée sur la méthode de la fréquence des contacts appliquée aux résultats de SLT superposés à partir d’au moins deux positions de balayage. La fréquence des contacts a été calculée pour des voxels de 10, 30 et 50 cm, puis corrigée de manière à tenir compte de l’influence des effets d’occlusion, de l’inclinaison des feuilles, de la présence de matière non photosynthétique et de la taille du faisceau laser. La surface foliaire pour laquelle les effets d’occlusion étaient trop prononcés a été estimée au moyen de valeurs modélisées fondées sur la disponibilité de la lumière. Nous avons comparé les estimations de la surface foliaire issues du SLT à celles de mesures directes obtenues par la collecte de feuilles dans une savane de feuillus à feuilles larges du centre du Mali. Les valeurs de surface foliaire mesurées sur les arbres échantillonnés variaient entre 30 et 530 m2, et les valeurs de l’indice foliaire s’établissaient entre 0,8 et 7,2. Les estimations de la surface foliaire affichaient en moyenne un écart de 14 % par rapport aux mesures de référence (biais général). Notre méthode permet d’obtenir les répartitions verticales et radiales de la surface foliaire des arbres individuels, et se prête à l’estimation des paramètres de la structure végétale des savanes à un grand niveau de détail.

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Hairy nightshade (Solanum sarrachoides Sendt.) and bitter nightshade (Solanum dulcamara L.) two leaf stage (TLS) seedlings and cotyledon leaves successfully baited P. erythroseptica from zoospore suspensions, artificially inoculated soils and naturally infested soils.

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Le Phytophthora erythroseptica, agent de la pourriture rose, est présent dans la plupart des grandes régions productrices de pomme de terre du monde. Le pathogène peut survivre pendant de nombreuses années dans le sol sous forme d’oospores dispersées par les tissus infectés des plantes. La capacité de détecter la présence de propagules du pathogène dans les champs permettrait aux producteurs d’adapter en conséquence leur programme de lutte contre les organismes nuisibles. Or, il est très difficile d’extraire des sols de l’ADN microbien se prêtant à la PCR. Nous avons mis au point une méthode combinant l’usage d’appâts et la PCR pour la détection du P. erythroseptica dans des échantillons de sol infestés. Nous avons réussi à piéger le P. erythroseptica dans des cotylédons et des semis au stade à deux feuilles de morelle à feuilles de coqueret (Solanum sarrachoides Sendt.) et de morelle douce amère (Solanum dulcamara L.), à partir de suspensions de zoospores, d’échantillons de sol infestés artificiellement et d’échantillons de sol naturellement infestés. Nous avons détecté le pathogène dans les appâts à l’aide de la PCR. La PCR a permis d’obtenir des résultats plus précis. Cependant, il fallait du temps pour que le pathogène infecte les tissus végétaux et s’y multiplie. Ainsi, bien que le P. erythroseptica a été détecté dans certains appâts après seulement 2 jours d’incubation, une période d’incubation de 10 jours a donné des résultats uniformes pour toutes les répétitions, avec les cotylédons et les semis au stade à deux feuilles de la morelle à feuilles de coqueret et de la morelle douce-amère.

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Hairy nightshade (Solanum sarrachoides Sendt.) and bitter nightshade (Solanum dulcamara L.) two leaf stage (TLS) seedlings and cotyledon leaves successfully baited P. erythroseptica from zoospore suspensions, artificially inoculated soils and naturally infested soils.

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Le Phytophthora erythroseptica, agent de la pourriture rose, est présent dans la plupart des grandes régions productrices de pomme de terre du monde. Le pathogène peut survivre pendant de nombreuses années dans le sol sous forme d’oospores dispersées par les tissus infectés des plantes. La capacité de détecter la présence de propagules du pathogène dans les champs permettrait aux producteurs d’adapter en conséquence leur programme de lutte contre les organismes nuisibles. Or, il est très difficile d’extraire des sols de l’ADN microbien se prêtant à la PCR. Nous avons mis au point une méthode combinant l’usage d’appâts et la PCR pour la détection du P. erythroseptica dans des échantillons de sol infestés. Nous avons réussi à piéger le P. erythroseptica dans des cotylédons et des semis au stade à deux feuilles de morelle à feuilles de coqueret (Solanum sarrachoides Sendt.) et de morelle douce amère (Solanum dulcamara L.), à partir de suspensions de zoospores, d’échantillons de sol infestés artificiellement et d’échantillons de sol naturellement infestés. Nous avons détecté le pathogène dans les appâts à l’aide de la PCR. La PCR a permis d’obtenir des résultats plus précis. Cependant, il fallait du temps pour que le pathogène infecte les tissus végétaux et s’y multiplie. Ainsi, bien que le P. erythroseptica a été détecté dans certains appâts après seulement 2 jours d’incubation, une période d’incubation de 10 jours a donné des résultats uniformes pour toutes les répétitions, avec les cotylédons et les semis au stade à deux feuilles de la morelle à feuilles de coqueret et de la morelle douce-amère.

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